En savoir plus

Notre utilisation de cookies

« Cookies » désigne un ensemble d’informations déposées dans le terminal de l’utilisateur lorsque celui-ci navigue sur un site web. Il s’agit d’un fichier contenant notamment un identifiant sous forme de numéro, le nom du serveur qui l’a déposé et éventuellement une date d’expiration. Grâce aux cookies, des informations sur votre visite, notamment votre langue de prédilection et d'autres paramètres, sont enregistrées sur le site web. Cela peut faciliter votre visite suivante sur ce site et renforcer l'utilité de ce dernier pour vous.

Afin d’améliorer votre expérience, nous utilisons des cookies pour conserver certaines informations de connexion et fournir une navigation sûre, collecter des statistiques en vue d’optimiser les fonctionnalités du site. Afin de voir précisément tous les cookies que nous utilisons, nous vous invitons à télécharger « Ghostery », une extension gratuite pour navigateurs permettant de les détecter et, dans certains cas, de les bloquer.

Ghostery est disponible gratuitement à cette adresse : https://www.ghostery.com/fr/products/

Vous pouvez également consulter le site de la CNIL afin d’apprendre à paramétrer votre navigateur pour contrôler les dépôts de cookies sur votre terminal.

S’agissant des cookies publicitaires déposés par des tiers, vous pouvez également vous connecter au site http://www.youronlinechoices.com/fr/controler-ses-cookies/, proposé par les professionnels de la publicité digitale regroupés au sein de l’association européenne EDAA (European Digital Advertising Alliance). Vous pourrez ainsi refuser ou accepter les cookies utilisés par les adhérents de l'EDAA.

Il est par ailleurs possible de s’opposer à certains cookies tiers directement auprès des éditeurs :

Catégorie de cookie

Moyens de désactivation

Cookies analytiques et de performance

Realytics
Google Analytics
Spoteffects
Optimizely

Cookies de ciblage ou publicitaires

DoubleClick
Mediarithmics

Les différents types de cookies pouvant être utilisés sur nos sites internet sont les suivants :

Cookies obligatoires

Cookies fonctionnels

Cookies sociaux et publicitaires

Ces cookies sont nécessaires au bon fonctionnement du site, ils ne peuvent pas être désactivés. Ils nous sont utiles pour vous fournir une connexion sécuritaire et assurer la disponibilité a minima de notre site internet.

Ces cookies nous permettent d’analyser l’utilisation du site afin de pouvoir en mesurer et en améliorer la performance. Ils nous permettent par exemple de conserver vos informations de connexion et d’afficher de façon plus cohérente les différents modules de notre site.

Ces cookies sont utilisés par des agences de publicité (par exemple Google) et par des réseaux sociaux (par exemple LinkedIn et Facebook) et autorisent notamment le partage des pages sur les réseaux sociaux, la publication de commentaires, la diffusion (sur notre site ou non) de publicités adaptées à vos centres d’intérêt.

Sur nos CMS EZPublish, il s’agit des cookies sessions CAS et PHP et du cookie New Relic pour le monitoring (IP, délais de réponse).

Ces cookies sont supprimés à la fin de la session (déconnexion ou fermeture du navigateur)

Sur nos CMS EZPublish, il s’agit du cookie XiTi pour la mesure d’audience. La société AT Internet est notre sous-traitant et conserve les informations (IP, date et heure de connexion, durée de connexion, pages consultées) 6 mois.

Sur nos CMS EZPublish, il n’y a pas de cookie de ce type.

Pour obtenir plus d’informations concernant les cookies que nous utilisons, vous pouvez vous adresser au Déléguée Informatique et Libertés de l’INRA par email à cil-dpo@inra.fr ou par courrier à :

INRA
24, chemin de Borde Rouge –Auzeville – CS52627
31326 Castanet Tolosan cedex - France

Dernière mise à jour : Mai 2018

Menu Logo Principal

Accueil

Micalis

Leyla Slamti

Leyla Slamti
Chercheur INRA CR1

- Me contacter

E-mail: Leyla Slamti

Téléphone: +33 (0)1 34 65 23 82

 

Expérience professionnelle :

- Research Scientist in the Génétique Microbienne et Environnement (GME) team headed by Dr Didier Lereclus, MICALIS Institute, UMR-1319, INRA.

     Project: Cell-cell communication, division of labor and genetic expression in sporulating Gram-positive bacteria

     Employed by the INRA.

     Since october 2010

   

- Research Associate in the Unité Biologie des Spirochètes headed by Dr Mathieu Picardeau, Institut Pasteur, Paris.

     Project: Characterization of the morphological determinants in Leptospira

     Employed by the Institut Pasteur.

     March 2009 - September 2010

   

- Post-doctoral Fellow in the laboratory headed by Pr Matthew K. Waldor, Tufts University and Harvard Medical School/Brigham and Women’s Hospital, Boston, MA, USA.

     Project: Characterization of the Vibrio cholerae stress response via the Cpx two-component system and the RpoH alternative sigma factor

     Employed by the Howard Hughes Medical Institute.

     March 2004 - February 2009

    

Formation :

- Microbiology and Molecular Biology Thesis

     Project:: The PlcR regulon in the Bacillus cereus group: cell-cell communication, genetic expression and diversity

     University Paris VII/Institut Pasteur, Paris, under the supervision of Dr Didier Lereclus, Unité de Biochimie Microbienne, Institut Pasteur, Paris/University Paris VII.

     Training grant from the Ministry of National Education, Research and Technology.

     Pasteur-Weizman Fellowship.

     January 2004

   

- Master in Microbiology

     Project: expression of the PlcR regulon in Bacillus thuringiensis

     University Paris VII/Institut Pasteur, Paris, under the supervision of Dr Didier Lereclus, Unité de Biochimie Microbienne, Institut Pasteur, Paris/University Paris VII.

     Higher education grant based on academic criteria.

     October 2000

   

- General Microbiology diploma

     Institut Pasteur, Paris.

     December 1999

   

- Bachelor of Science

      Molecular and Cellular Biochemistry option Microbiology

      University Paris VII.

      June 1999

   

Publications :

h-index (Web of Knowledge): 14

26. Wunder E.A.*, Slamti L.*, Suwondo D.N., Gibson K.H., Shang Z., Sindelar C.H., Trajtenberg F., Buschiazzo A., Ko A.I. and Picardeau M.  (2018) FcpB is a surface filament protein of the endoflagellum required for the motility of the spirochete Leptospira Front. Cell. Infect. Microbiol. doi: 10.3389/fcimb.2018.00130

25. Ben Rejeb S., Lereclus D., Slamti L.* (2017) Analysis of abrB Expression during the Infectious Cycle of Bacillus thuringiensis Reveals Population Heterogeneity Front. Microbiol. 12;8:2471

24. Gélis-Jeanvoine S., Canette A., Gohar M., Caradec T., Lemy C., Gominet M., Jacques P., Lereclus D.*, Slamti L.*. (2017) Genetic and functional analyses of krs, a locus encoding kurstakin, a lipopeptide produced by Bacillus thuringiensis. Res Microbiol. S0923-2508(16)30062-6.

23. Verplaetse E, Slamti L, Gohar M, Lereclus D. (2017) Two distinct pathways lead Bacillus thuringiensis to commit to sporulation in biofilm. Res Microbiol. S0923-2508(16)30003-1.

22. Slamti L*, Lemy C, Henry C, Guillot A, Huillet E, Lereclus D. (2016) CodY regulates the activity of the virulence quorum sensor PlcR by controlling the import of the signaling peptide PapR in Bacillus thuringiensis. Front. Microbiol. 6;6:1501.

21. Dubois T, Faegri K, Gélis-Jeanvoine S, Perchat S, Lemy C, Buisson C, Nielsen-LeRoux C, Gohar M, Jacques P, Ramarao N, Slamti L, Kolstø AB, Lereclus D. (2016) Correction: Necrotrophism Is a Quorum-Sensing-Regulated Lifestyle in Bacillus thuringiensis. PLoS Pathog. 12(11):e1006049. doi: 10.1371/journal.ppat.1006049.

20. Verplaetse E, Slamti L, Gohar M, Lereclus D. (2015) Cell Differentiation in a Bacillus thuringiensis population during planktonic growth, biofilm formation, and host infection. MBio. 28;6(3).

19. Zhou L., Slamti L., Nielsen-LeRoux C., Lereclus D., Raymond B. (2014) The social biology of quorum sensing in a naturalistic host pathogen system. Curr. Biol. 24(20):2417-22.

18. Slamti L.*, Perchat S., Huillet E., Lereclus D. (2014) Quorum sensing in Bacillus thuringiensis is required for completion of a full infectious cycle in the insect Toxins (Basel). 6(8):2239-55. Revue

17. Deng C., Slamti L., Raymond B., Liu G., Lemy C., Gominet M., Yang J., Wang H., Peng Q., Zhang J., Lereclus D., Song F. (2014) Division of labour and terminal differentiation in a novel Bacillus thuringiensis strain. ISME J. doi: 10.1038/ismej.2014.122.

16. Taylor D.L., Bina X.R., Slamti L., Waldor M.K., Bina J.E. (2014) Reciprocal Regulation of Resistance-Nodulation-Division Efflux Systems and the Cpx Two-Component System in Vibrio cholerae. Infect Immun. 82(7):2980-91.

15. Vörös A., Simm R., Slamti L., McKay M.J., Hegna I.K., Nielsen-LeRoux C., Hassan K.A., Paulsen I.T., Lereclus D., Okstad O.A., Molloy M.P., Kolstø A.B. (2014) SecDF as part of the Sec-translocase facilitates efficient secretion of Bacillus cereus toxins and cell wall-associated proteins. PLoS One. 9(8):e103326.

14. Grenha R., Slamti L., Nicaise M., Refes Y., Lereclus D., Nessler S. (2013) Structural basis for the activation mechanism of the PlcR virulence regulator by the quorum-sensing signal peptide PapR. Proc Natl Acad Sci U S A. 110(3):1047-52.

13. Slamti L., Picardeau M. (2012) Construction of a library of random mutants in the spirochete Leptospira biflexa using a mariner transposon.Methods Mol Biol. 859:169-76. Chapitre de livre

12. Slamti L., de Pedro M., Guichet M. and Picardeau M. (2011) Deciphering morphological determinants of the helix-shaped Leptospira. J Bacteriol. 193: 6266-6275.

11. Aviat F., Slamti L., Cerqueira G. M., Lourdault K., Picardeau M. (2010) Expanding the genetic toolbox for Leptospira species by generation of fluorescent bacteria. Appl Environ Microb. 76 :8135-8142.

10. Choi A.H.K., Slamti L., Avci F.Y., Pier G.B., Maira-Litrán T. (2009) The pgaABCD locus of Acinetobacter baumannii encodes the production of Poly-ß-1-6-N-acetyl-glucosamine PNAG that is critical for biofilm formation. J Bacteriol. 191: 5953-5963.

9. Slamti L., Waldor M.K. (2009) Genetic analysis of the Vibrio cholerae Cpx system. J Bacteriol. 191: 5044-5056.

8. Bouillaut L., Perchat S., Arold S.T., Zorrilla S., Slamti L., Henry C., Gohar M., Declerck N., Lereclus D. (2008) Molecular basis for group-specific activation of the virulence regulator PlcR by PapR heptapeptides. Nucleic Acids Res. 36(11):3791-801.

7. Declerck N., Bouillaut L., Chaix D., Rugani N., Slamti L., Hoh F., Lereclus D., Arold S.T. (2007) Structure of PlcR: Insights into virulence regulation and evolution of quorum sensing in Gram-positive bacteria. Proc Natl Acad Sci. U S A. 104: 18490-18495. Recommended by Faculty of 1000 Biology.

6. Slamti L., Livny J., Waldor M.K. (2007) Global gene expression and phenotypic analysis of a Vibrio cholerae rpoH deletion mutant. J Bacteriol. 189: 351-362.

5. Slamti L. and Lereclus D. (2005). Specificity and polymorphism of the PlcR-PapR quorum-sensing system in the Bacillus cereus group. J Bacteriol. 187: 1182-1187.

4. Slamti L., Perchat S., Gominet M., Vilas-Bôas G., Fouet A., Mock M., Sanchis V., Chaufaux J., Gohar M., and Lereclus D. (2004). Distinct mutations in PlcR explain why some strains in the Bacillus cereus group are nonhemolytic. J Bacteriol. 186: 3531-3538.

3. Fedhila S., Gohar M., Slamti L., Nel P. and Lereclus D. (2003). The Bacillus thuringiensis PlcR-regulated gene inhA2 is necessary, but not sufficient, for virulence. J Bacteriol. 185: 2820-2825.

2. Slamti L. and Lereclus D. (2002). A cell-cell signaling peptide activates the PlcR virulence regulon in bacteria of the Bacillus cereus group. EMBO J. 21: 1-10. Recommended by Faculty of 1000 Biology.

1. Gominet M., Slamti L., Gilois N., Rose M. and Lereclus D. (2001). Oligopeptide permease is required for expression of the Bacillus thuringiensis PlcR regulon and for virulence. Mol Microbiol. 40: 963-975.

   

*Corresponding author

*Contributed equally to this work.

   

Brevet :

- Lereclus D., Song F., Slamti L., Deng C., Zhang J. Characterization of an expression system for the production of Cry proteins in Bacilllus spp. (EP17305011.3)